包装与品牌:
产品名称 | 规格 | 品牌 |
植物基因组DNA快速提取试剂盒 | 50次/100次 | 一研 |
产品介绍:
产品说明
本产品可用于拟南芥、烟草、水稻等植物样本的基因纯化。纯化原理是利用硅胶膜柱可逆吸附体系中的DNA,经漂洗液清洗除去蛋白质、脂质以及多纯化液洗脱获得基因组DNA。一次可从不超过100材料中提取到2-20μg的高纯度基因组(OD260/OD280=1.7-1.9),此基因组DNA可直接酶切等后续实验。
质量控制
纯化的基因组DNA质量通过限制性酶切和单拷
保存条件
RNase保存于-20℃。其他的室温保存
注意事项
●漂洗液PE第一次使用前请按瓶上标签加入3倍体积的无水乙醇,即15ml漂洗液PE加入45ml无水乙醇,30ml漂洗液PE加入90ml无水乙醇,使用后立即盖紧盖子。
●缓冲液GPL室温保存可能会有沉淀产生,在56℃加热溶解,待恢复室温后混匀即可使用。不会影响基因组DNA纯化效率。
●应尽量使用新鲜的实验材料,确保提取的基因组DNA不被降解。不能立刻提取基因组DNA的实验材料应尽快置于液氮或-70℃
冰箱中保存并避免反复冻融。
●使用液氮研磨组织材料时,应随时加入液氮,确保提取的基因组DNA不被降解。
●基因组DNA需长期保存时,建议使用纯化液TE。用无菌的离心管分装后保存于-20℃或-80℃。
●所有离心步骤均为室温下进行。
●请严格按照操作步骤操作。
操作步骤
1 取植物新鲜组织约100mg或干重组织约30mg,加入液氮充分研磨。
2 将研磨好的粉末迅速转移到预先装有700μl65℃预热缓冲液GPL的离心管中(实验前在预热的GPL中加入巯基乙醇,使其终浓度为0.1%),加入1μlRNase,迅速颠倒混匀后,将离心管放在65℃水浴20min,水浴过程中颠倒离心管以混匀样品。
3 加入700μl氯仿,充分混匀,12,000rpm(~13,400×g)离心5min。
●如果是提取富含多酚或淀粉的植物组织,可在第3步前,用酚:氯仿/1:1进行等体积抽提。
4 小心将上一步所得上层水相转入一个新的离心管中,加入等体积缓冲液GPD,充分混匀。
5 将混匀的液体转入纯化柱,静置1min,12,000rpm离心30sec,弃滤液。(吸附柱容积为700μl左右,可分次加入离心。)
6 向纯化柱中加入500μl去蛋白液PS。12,000rpm离心30sec,弃滤液。
7 向纯化柱中加入500μl漂洗液PE。12,000rpm离心30sec,弃滤液。
8 重复步骤7,向纯化柱中加入500μl漂洗液PE。12,000rpm离心30sec,弃滤液。
9 离心纯化柱,12,000rpm离心2min,以彻底去除纯化柱中残留的液体。
●此步骤的作用是去除残留乙醇,避免影响后续的酶促反应(PCR或酶切)。同时利于基因组DNA充分溶解。
10 将纯化柱置于新的1.5ml离心管中。向纯化柱中央处,悬空滴加40-100μl纯化液TE。室温放置2min。12,000rpm离心2min,管底即为高纯度基因组DNA。-20℃保存。
●纯化液TE可用去离子水代替,但其pH需为8.0-8.5。
●对纯化液TE60℃预热,会提高基因组DNA的产量。
注意事项:
● RNA样本保存液如出现沉淀,37℃加热振荡混匀。
● 加入RNA样本保存液后,样本不能立即置于-20℃或-80℃,要先4℃置放过夜,待组织充分浸润后再置于低温保存。
● 样品浸没在RNA样本保存液中,可在37℃保存1天,25℃保存1周,4℃保存1个月,-20℃长期保存;使用时请注意保存时限。
● 保存在RNA样本保存液中的样本可不经特殊处理,离心或直接使用和新鲜组织一样的RNA提取方法提取RNA。
● RNA样本保存液可以配合各种常见的RNA提取试剂盒使用,如东盛、invitrogen、omega等公司出品的RNA提取试剂盒,不影响试剂盒操作,不影响提取所得RNA质量及其后续实验。