包装与品牌:
产品名称 | 规格 | 品牌 |
血液基因组大量提取试剂盒 | 50次/100次 | 一研 |
产品介绍:
产品说明
本产品可用于全血样本的基因组DNA的纯化。纯化原理是首先利用红细胞裂解液先去除血液中的红细胞*,细胞裂解液裂解细胞核释放基因组DNA,由硅胶膜柱可逆吸附体系内的基因组DNA,经蛋白酶消化、漂洗液清洗除去蛋白质、脂质等杂质后,用纯化液洗脱获得基因组DNA。本产品适用于未凝固全血,以及经各种抗凝剂(EDTA、肝素、柠檬酸)处理过的全血样本。一次可从5-10 ml全血中提取到30-200 μg高纯度基因组DNA(OD260/OD280 =1.7-1.9),此基因组DNA可直接用于PCR、酶切等后续实验。
*本产品不能从全血中直接提取DNA,要去除血液中红细胞后才能得到高浓度的基因组DNA。如要直接从全血迅速提取高纯度基因组DNA,建议选择Quick血液基因组DNA提取试剂盒(货号:N1131、N1132)。
质量控制
纯化的基因组DNA质量通过限制性酶切和单拷基因的PCR扩增鉴定。
保存条件
蛋白酶K于-20℃保存。
其余试剂置于室温(15-25℃)干燥条件下保存1年。
如果消化缓冲液DS和MS中沉淀,可在55℃加热溶解,待恢复室温后混匀即可使用。不会影响基因组DNA的纯化效率。
操作步骤
1 取血液样本,每5-10 ml血液加入到一只50 ml离心管中。加入2倍体积的红细胞裂解液RS。漩涡振荡或上下来回颠倒混匀。5,000 rpm离心3min,弃上清,收集白色或淡红色沉淀,重复上诉步骤。
● 如沉淀仍然呈深红色,表明红细胞裂解不充分,可再加等体积红细胞裂解液RS处理一次。
● 对于哺乳动物全血,每5-10 ml全血中可提取30-200 μg的基因组DNA。如从鸟类、两栖类或更低级的动物血液中提取基因组DNA,因其血液中红细胞有细胞核,血液用量勿超过500 μl/离心管。每500 μl全血中可提取200 μg的基因组DNA。
2 加入5 ml消化缓冲液DS,漩涡振荡至形成完全均一的悬浮液。
● 如需去除RNA,可加入100 μl RNase A(100 mg/ml),振荡15秒,室温放置5min。
3 加入500 μl蛋白酶K和5.5 ml裂解液MS,漩涡振荡混匀。65℃温浴15 min。溶液应变清亮,简短离心以去除管盖内壁的水珠。
● 加入裂解液MS时可能会产生白色沉淀,一般65℃放置时会消失,不会影响后续实验。如溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取出的DNA 不纯。
4 加入5.5 ml无水乙醇,上下颠倒混匀。此时可能出现絮状沉淀。简短离心以去除管盖内壁的水珠。将溶液及絮状沉淀转移到纯化柱中。12,000rpm离心1min,弃滤液。
● 此时基因组DNA被吸附于DNA纯化柱中的硅胶膜上。
5 加入10 ml去蛋白液PS。12,000 rpm离心1min,弃滤液。
● 此步骤的作用是去除硅胶膜上吸附的蛋白、脂质等杂质,以获得高质量基因组DNA。
6 加入10 ml漂洗液PE。12,000 rpm离心1min,弃滤液。
● 漂洗液PE初次使用前用无水乙醇按1: 3稀释,即含75%乙醇。
7 加入10 ml漂洗液PE。12,000 rpm离心1min,弃滤液。
8 12,000 rpm离心3min,以彻底去除纯化柱中残留的液体。
● 此步骤的作用是去除残留乙醇,避免影响后续的酶促反应(PCR或酶切)。同时利于基因组DNA充分溶解。
9 将纯化柱置于新的1.5 ml离心管中。向纯化柱中央处,悬空滴加30-100μl洗脱液TE。室温放置2min。
10 12,000 rpm离心2min,管底即为高纯度基因组DNA。-20℃保存。
● 洗脱液TE可用去离子水代替,但其pH需为8.0-8.5。
● 对洗脱液TE 60℃预热,会提高基因组DNA的产量。
注意事项:
● RNA样本保存液如出现沉淀,37℃加热振荡混匀。
● 加入RNA样本保存液后,样本不能立即置于-20℃或-80℃,要先4℃置放过夜,待组织充分浸润后再置于低温保存。
● 样品浸没在RNA样本保存液中,可在37℃保存1天,25℃保存1周,4℃保存1个月,-20℃长期保存;使用时请注意保存时限。
● 保存在RNA样本保存液中的样本可不经特殊处理,离心或直接使用和新鲜组织一样的RNA提取方法提取RNA。
● RNA样本保存液可以配合各种常见的RNA提取试剂盒使用,如东盛、invitrogen、omega等公司出品的RNA提取试剂盒,不影响试剂盒操作,不影响提取所得RNA质量及其后续实验。