t值（阈值循环数）是PCR扩增曲线中的一个核心指标，它告诉你样本中目标核酸的初始含量。简单来说，Ct值越小，说明起始模板量越多；Ct值越大，说明起始模板量越少。
核心意义
定量依据：Ct值与起始模板量的对数呈线性关系，通过标准曲线可以计算出未知样品的精确拷贝数。
定性判断：在病原体检测中，Ct值用于判断样本是否为阳性（通常设定一个阈值，如Ct<35为阳性）。
关键点
反比关系：Ct值与起始模板量成反比，这是qPCR定量的基础。
实验条件：Ct值受引物效率、反应体系等因素影响，需严格标准化。
2. 反映PCR反应的扩增效率
在理想状态下（扩增效率100%），初始模板每经过1个循环就会翻倍，Ct值每相差1，初始模板浓度就相差1倍。但实际反应中，扩增效率可能受引物设计、模板质量、反应体系等因素影响偏离100%。
通过标准曲线的斜率可以计算扩增效率：斜率为-3.32时，扩增效率为100%；斜率在-3.1~-3.5之间，说明扩增效率良好（90%~110%）；斜率偏离这个范围，则提示反应体系可能存在抑制或非特异性扩增，需要优化实验条件。
3. 评估反应体系的特异性与可靠性
正常的特异性扩增会呈现“单一、尖锐”的Ct值，且重复样品的Ct值变异系数（CV）通常小于2%；如果出现多个Ct值或CV值过大，可能提示存在非特异性扩增（如引物二聚体、非目标片段扩增）或实验操作误差。
阴性对照（无模板对照NTC）的Ct值应大于35或无Ct值，若阴性对照出现较小的Ct值，说明反应体系存在污染（如气溶胶污染、试剂污染）。